Les champignons toxinogènes impliqués dans les chaînes alimentaires humaines et animales appartiennent principalement à trois genres: Aspergillus, Fusarium et Penicillium.3 Chacune de ces moisissures peut produire plus d'une toxine et certaines toxines sont produites par plus d'une moisissure.
Le tableau ci-dessous est dérivé de diverses sources et montre certaines des principales mycotoxines produites par chacun des trois champignons toxinogènes. Il ne s’agit pas d’un tableau exhaustif, mais bien d’une grande variété de mycotoxines produites par un petit nombre de moisissures.
Genre fongique
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Mycotoxine produite
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Aspergillus
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Aflatoxine, Ochratoxine, Sterigmatocystine, Fumitremorgens, Fumitoxines, Fumigaclavines, Acide cyclopiazonique, Gliotoxine.
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Fusarium
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Déoxynivalénol, Zéaralénone, Toxine T-2, Fumonisine, Moniliformine, Nivalénol, Diacétoxyscirpénol, Néosolaniol, Acide fusarique, Fusarochromanone, Fusarin C, Fusaproliferin, Beauvéricine, Enniatins.
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Penicillium
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Ochratoxine, Toxine PR, Patuline, Acide pénicillique, Citrinine, Penitrem, Acide cyclopiazonique, Roquefortine, Fumigaclavine C, Acide mycophénolique, Wortmannin.
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Les mycotoxines en gras dans le tableau sont les toxines généralement reconnues comme ayant le plus gros impact sur les espèces de bétail et de volaille. Beaucoup d’articles ont été écrits sur l'impact que chacune de ces mycotoxines peut avoir sur la santé et la performance.
Une fois que nous avons des mycotoxines dans nos récoltes, quelles options existent pour les producteurs de bétail et de volaille? Étant donné que la majeure partie du grain utilisé pour nourrir les animaux ne provient pas de producteurs de bétail ou de volaille, ces producteurs «héritent» des mycotoxines formées pendant la saison de croissance et ont besoin de stratégies pour faire face à ces mycotoxines.
Une considération de gestion est d'éviter de former plus de mycotoxines. Les moisissures d’entreposage, tout comme les moisissures dans le champ, peuvent produire des mycotoxines. Assurez-vous d’enlever le vieux maïs des installations d’entreposage avant d'introduire du nouveau maïs. Enlevez le grain sur les côtés des silos, nettoyez la poussière de grain et balayez toutes les surfaces planes pour éliminer toute source de spores de moisissure. Si le compartiment de stockage présentait un grain moisi avant le chargement actuel, utilisez un désinfectant par pulvérisation sur toutes les surfaces intérieures. L'Université du Nebraska-Lincoln Extension4 partage les pratiques d'assainissement suivantes:
- Un mélange de désinfectant efficace pour la contamination fongique sur des surfaces non poreuses, telles que les silos, contient 1/2 gallon d’agent de blanchiment domestique et 10 gallons d’eau.
- Attendez plusieurs jours, puis rincez la zone où le mélange a été appliqué.
- Les vapeurs de chlore sont dangereuses. Ayez suffisamment de ventilation lorsque vous travaillez dans le silo et ne mélangez jamais d'eau de javel avec de l'ammoniac ou du vinaigre!
L'utilisation d'inhibiteurs de moisissure est une pratique de gestion très courante et aidera à contrôler la croissance des moisissures d’entreposage. Il est important de se rappeler que, une fois que la moisissure a endommagé le maïs ou que des mycotoxines se forment, les inhibiteurs de moisissure ne résoudront pas ces problèmes. Il a été démontré que les mélanges d’acides organiques contrôlent efficacement la croissance des moisissures lorsqu’ils sont appliqués au grain. Dixon et Hamilton ont étudié les effets des acides propionique, acétique, sorbique et benzoïque comme inhibiteurs de moisissure.5 Kemin fabrique Myco CURB® Liquid et Myco CURB® Dry - deux inhibiteurs de moisissure multi-acides - conçus spécifiquement pour contrôler la croissance de moisissure dans les céréales, les aliments pour animaux et leurs ingrédients.
Une deuxième considération consiste à sécher le maïs le plus rapidement possible. Pour les producteurs de bétail et de volaille qui achètent du maïs au printemps, la majeure partie du maïs arrive bien en dessous de 14% d'humidité. Toutefois, à l'automne, le maïs contenant plus de 15% d’humidité est commun. La durée de conservation du maïs est environ deux fois plus longue à 14% contre 15% d’humidité à la même température.4 Plusieurs guides sont disponibles pour vous aider à déterminer les besoins en flux d’air et la teneur en humidité en fonction de l’humidité relative, mais la façon la plus facile d’éliminer l'humidité du grain est de faire bouger de l’air. Le rayonnement solaire peut provoquer une migration d'humidité, car le côté sud des silos en métal se réchauffe les jours ensoleillés. Faire fonctionner les ventilateurs d'aération chaque semaine peut aider à éliminer les poches d'humidité créées par le chauffage diurne et le refroidissement nocturne.
Refroidissez le grain et conservez-le au frais pendant l'hiver. L'aération et l'élimination de l'humidité peuvent refroidir le grain. L'objectif final dans les climats nordiques est de refroidir le grain à moins de -5°C (30°F). Dans les climats méridionaux, il n'est pas souvent possible de refroidir le grain à ce niveau, aussi aérez le silo pour refroidir le grain quand la température du grain est supérieure de 6°C à la température de l'air.4
Une fois la mycotoxine formée, que peuvent faire les producteurs pour minimiser leur impact sur la santé et les performances des animaux? Une stratégie utilisée depuis de nombreuses années consiste à décontaminer les aliments en séquestrant la mycotoxine. Cette pratique d'élimination ou de neutralisation des mycotoxines est utilisée en incorporant des agents d'écoulement ayant une efficacité démontrée dans des recherches universitaires et indépendantes contrôlées.6,7 Une évaluation in vitro a montré que les classes de composés suivants présentent une bonne efficacité pour la séquestration de ces métabolites2:
Charbon activ.
Montmorillonite/Bentonite
Zéolite
Aluminosilicates de calcium et de sodium hydratés
Agents dérivés d’écorce de levure
Les éleveurs de bétail et de volaille ont plusieurs stratégies à leur disposition pour réduire la formation de mycotoxines dans les grains entreposés. Une fois que les mycotoxines sont formées, les options sont limitées, mais des études scientifiques ont montré l'efficacité de composés prouvant leur capacité à séquestrer les mycotoxines.
Références
1Harper, Douglas. "myco" and “toxin”. Online Etymology Dictionary.
2Diaz, D. E. (Editor) 2005. The Mycotoxin Blue Book Nottingham University Press.
3Sweeney, M. J. and A. D. W. Dobson. 1998. Mycotoxin production by Aspergillus, Fusarium and Penicillium species. Intern. J. Food Microbiol. 43:141-158.
4Dorn, T. W. 2012. Grain Storage Management to Minimize Mold & Mycotoxins. University of Nebraska-Lincoln Extension. Found on November 16, 2018, at https://cropwatch.unl.edu/documents/UNL-Grain-Quality-2012-10-4-2012-Dorn.pdf.
5Dixon, R. C. and P. B. Hamilton. 1981. Effect of food ingredients on the antifungal activity of propionic acid. Poult. Sci. 60:2407-2411.
6Ramos, A. J., J. Fink-Gremmels, and E. Hernández. 1996. Prevention of toxic effects of mycotoxins by means of nonnutritive adsorbent compounds. J. Food Protection. 59(6):631-641.
7Vila-Donat, P., S. Marín, V. Sanchis, and A. J. Ramos. 2018. A review of the mycotoxin adsorbing agents, with an emphasis on their multi-binding capacity, for animal feed decontamination. Food and Chemical Toxicology. 114:246-259.